Författarbidrag:SB och YEK utformade och utformade granskningens struktur och innehåll. SB analyserade uppgifterna och skrev manuskriptet. EEM, MS, HB, NM, LK och YEK bidrog till skrivandet – granskning och redigering. YEK ledde projektet. Alla författare har läst och samtyckt till den publicerade versionen av manuskriptet.

Glykosid av cistanche kan också öka aktiviteten av SOD i hjärt- och levervävnader och avsevärt minska innehållet av lipofuscin och MDA i varje vävnad, effektivt rensa upp olika reaktiva syreradikaler (OH-, H₂O₂, etc.) och skydda mot DNA-skador orsakade av OH-radikaler. Cistanche-fenyletanoidglykosider har en stark rensande förmåga av fria radikaler, en högre reducerande förmåga än vitamin C, förbättrar aktiviteten av SOD i spermiesuspension, minskar innehållet av MDA och har en viss skyddande effekt på spermiemembranets funktion. Cistanche-polysackarider kan öka aktiviteten av SOD och GSH-Px i erytrocyter och lungvävnader hos experimentellt åldrande möss orsakade av D-galaktos, samt minska innehållet av MDA och kollagen i lungor och plasma, och öka innehållet av elastin, har en god renande effekt på DPPH, förlänger hypoxitiden hos åldrande möss, förbättrar aktiviteten av SOD i serum och fördröjer den fysiologiska degenerationen av lungor hos experimentellt åldrande möss. Med cellulär morfologisk degeneration har experiment visat att Cistanche har den goda antioxidantförmågan och har potential att vara ett läkemedel för att förebygga och behandla åldrande hudsjukdomar. Samtidigt har echinacoside i Cistanche en betydande förmåga att avlägsna DPPH-fria radikaler och har förmågan att avlägsna reaktiva syrearter och förhindra friradikal-inducerad kollagennedbrytning, och har även en god reparationseffekt på anjonskada av tymin-fria radikaler.

Klicka på Cistanche Tablets Benefits

【För mer information:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Finansiering:Denna forskning finansierades av OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Marocko, anslag nr PR008.

Uttalande av institutionell granskningsnämnd:Inte tillämpbar.

Informerat samtycke:Inte tillämpbar.

Datatillgänglighetsförklaring:Datadelning gäller inte för denna artikel eftersom inga datamängder genererades eller analyserades under den här studien.

Intressekonflikt:Författarna förklarar att forskningen utfördes i frånvaro av några kommersiella eller finansiella relationer som skulle kunna tolkas som potentiella intressekonflikter.

Referenser

1. Växtcellsteknik – din partner inom växtvävnadskultur. Tillämpning av växtcellsteknologi i kosmetisk industri. Tillgänglig online:

2. Precedensforskning. Anläggningsextraktens marknadsstorlek kommer att nå runt 22,49 miljarder USD 2030.

3. Precedensforskning. Marknadsstorlek för växtextrakt värd cirka 22,49 miljarder USD år 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Plant Stem Cells in Cosmetics: Aktuella trender och framtida riktningar. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Plant Cell Culture as Emerging Technology for Production of Active Cosmetic Ingredients. Eng. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. Växtvävnadskultur in vitro: medel för produktion av biologiskt aktiva föreningar. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Framsteg inom växtbioteknologiska tillvägagångssätt för förökning och produktion av bioaktiva föreningar. J. Etnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Miljöpåfrestningar på hudens åldrande. Mekanistiska insikter. Främre. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomi, hud (integument), epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Molekylära mekanismer för dermal åldrande och antiaging-metoder. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktiva föreningar för hudhälsa: en recension. Näringsämnen 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Hudbosatta medfödda lymfoida celler – kutan medfödda väktare och regulatorer. Trender Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Nuvarande tillstånd för SLC- och ABC-transportörer i huden och deras relation till svettmetaboliter och hudsjukdomar. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkörer för cellulär åldrande och hudens åldrande. Främre. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Hudförändringar under åldrande. I biokemi och cellbiologi av åldrande: Del II klinisk vetenskap; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2019; Volym 91, s. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oxidativ stress i åldrande mänsklig hud. Biomolecules 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Fernblock Förhindrar skador på hudceller som orsakas av synlig och infraröd strålning. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Oxidationshändelser och hudens åldrande. Åldrande Res. Upps. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultraviolet Photobiology in Dermatology. I ultraviolett ljus i människors hälsa, sjukdomar och miljö; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2017; Volym 996, s. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potentiella hälsofördelar med vegetabiliska livsmedelsbaserade bioaktiva komponenter: en översikt. Foods 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Fytokemisk profilering av bladextraktet från Ximenia Americana Var. Caffra och dess antioxidanter, antibakteriella och antiaging-aktiviteter in vitro och vid Caenorhabditis Elegans: en kosmetisk och dermatologisk metod. Oxid. Med. Cell. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktiva ämnen av växtursprung 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Växt- och djurbaserade antioxidanters struktur, effektivitet, mekanismer och tillämpningar: En recension. Antioxidanter 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Hållbar produktion av polyfenoler och antioxidanter av växter in vitro-kulturer. Inom biobearbetning av anläggningens in vitro-system; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2018; s. 225–269.

26. Namdeo, A. Växtcellsframkallning för produktion av sekundära metaboliter: en recension. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Biobearbetning av växtcellskulturer för massproduktion av riktade föreningar. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ Fruktkvalitet, Antioxidantkapacitet och Flavonoidinnehåll i organiskt och konventionellt odlade blåbär. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Produktion och konstruktion av terpenoider i växtcellskultur. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Effekten av bevattning med reglerat underskott på kvalitetsparametrar, karotenoider och fenoler av olika tomatsorter (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. En jämförande fysiologisk och transkriptionell studie av karotenoidbiosyntes i vit och röd grapefrukt (Citrus Paradisi Macf.). Träd Genet. Genomes 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL Nya framsteg inom bioraffinaderi av Astaxanthin från Haematococcus Pluvialis. Bioresur. Technol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Bioteknologisk produktion av karotenoider med lågkostnadssubstrat påverkas av odlingsparametrar: en översyn. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Växtpolyfenoler: kemiska egenskaper, biologiska aktiviteter och syntes. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Heterolog produktion av resveratrol i bakterievärdar: nuvarande status och perspektiv. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Produktion av resveratrol i rekombinanta mikroorganismer. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Engineering Yeast för högnivåproduktion av stilbenoidantioxidanter. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspar, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis för Stilbene-produktion. I Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Wien, Österrike, 11 juli 2016; DTU Danmark: Kongens Lyngby, Danmark, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Konstruktion av en Corynebacterium Glutamicum-plattformsstam för produktion av stilbener och (2S)-flavanoner. Metab. Eng. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: En genomgång av växtkällor, syntes, stabilitet, modifiering och livsmedelstillämpning. J. Sci. Food Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Reglering av malonyl-CoA-metabolism via syntetiska antisens-RNA för förbättrad biosyntes av naturliga produkter. Metab. Eng. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Bioaktivitet och biotillgänglighet av fytoen och strategier för att förbättra dess produktion. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, en effektiv strategi för bioteknologisk produktion av bioaktiva föreningar med högt förädlingsvärde i växtcellsfabriker. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Bioteknologisk produktion av taxol och relaterade taxoider: nuvarande tillstånd och framtidsutsikter. Anti-cancermedel Med. Chem. Före detta. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Högdensitetskultur av Coptis Japonica-celler ökar berberinproduktionen. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Produktion av Podophyllotoxin av växtcellskulturer av Podophyllum Hexandrum i bioreaktor. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Ljuseffekt på karotenoidproduktion och uttryck av karotenogenesgener i citruskallus av fyra genotyper. Acta Physiol. Växt. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Insikter i antioxidantaktiviteter och anti-hudåldrande potential hos callusextrakt från Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Effekt av pentacykliska triterpenoider-rika kallusextrakt av Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach om livsduglighet, morfologi och spridning av normalhudsfibroblaster. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Trans-kanelsyra dämpar UVA-inducerad fotoåldring genom hämning av AP-1 aktivering och induktion av Nrf2-medierade antioxidantgener i human hudfibroblaster. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Beredning, karakterisering och biologiska aktiviteter av aktuella anti-aging ingredienser i ett Citrus Junos Callus Extrakt. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Beneficial Effects of Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos-extrakt på åldrande och antioxidanter in vitro och in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Etablering av kallus- och cellsuspensionskulturer av Granny Smith Äppelfrukt och antityrosinasaktivitet av deras extrakt. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Valorisering av fotoskyddspotentialen hos det fytokemiskt standardiserade olivextraktet (Olea Europaea L.) lövextrakt i UVA-bestrålade humana hudfibroblaster. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. En ny roll för ginsenosid RG3 i antiaging via mitokondrierfunktion i ultraviolettbestrålade humana hudfibroblaster. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Anti-aging effekter av Piper Cambodianum P. Fourn. Extrakt på normala humana hudfibroblastceller och en sårläkningsmodell i möss. Clin. Interv. Åldrande 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Framkallande av Pueraria Candollei Var. Mirifica Suspension Cells lovar antioxidantpotential, vilket antyder antiaging-aktivitet. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Anti-aging aktiviteter av Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Effekter av Tiarella Polyphylla D. Don Callus-extrakt på fotoåldring i humana förhudsfibroblaster Hs68-celler. Nat. Driva. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Ersätter vegetativa växtdelar med calluscellextrakt: Fallstudie med Woodfordia Fruticosa Kurz. – En kraftfull ingrediens i hudvårdsformuleringar. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Skydd av UVB-inducerad fotoåldring av Fuzhuan-Brick Tea-vattenextrakt via MAPKs/Nrf2--medierad nedreglering av MMP-1. Näringsämnen 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. De dermatoskyddande effekterna av Lucidon från Lindera Erythrocarpa genom induktion av Nrf2-medierade antioxidantgener i UVA-bestrålade humana hudkeratinocyter. J. Funktion. Livsmedel 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Jo, Y.; Choi, H.; Lee, JH Anti-aging effekter av Leontopodium Alpinum (Edelweiss) Callus Culture Extract genom transkriptomprofilering. Gener 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Antioxidant- och anti-åldrande aktiviteter för kalluskultur från tre rissorter. Cosmetics 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potentiell användning av Amla (Phyllanthus Emblica L.) fruktextrakt för att skydda hudkeratinocyter från inflammation och apoptos efter UVB-bestrålning. Antioxidanter 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) som en källa till bioaktiva föreningar: polyfenolisk profil, cytotoxicitet och cytoprotektiva egenskaper i olika cellinjer. Främre. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Beredning och karaktärisering av kallusextrakt från Pyrus Pyrifolia och undersökning av dess effekter på hudregenerering. Cosmetics 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petrok, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Isolation of Myricitrin and 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin from Syzygium Samarangense och utvärdering av deras inblandning i att skydda keratinocyter mot oxidativ stress via aktivering av Nrf-2-vägen. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Mikroförökning av ingefära (Zingiber Officinale Roscoe) 'Bentong' och utvärdering av dess sekundära metaboliter och antioxidantaktiviteter jämfört med den konventionellt förökade växten. Plants 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ektopiskt uttryck för produktion av antocyaninpigment 1 (PAP1) Förbättrar antioxidant och anti-melanogena egenskaper hos ginseng (Panax Ginseng CA Meyer) håriga rötter. Antioxidants 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa hårrotsextrakt främjar huddepigmentering genom att modulera melaninproduktion och distribution. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petrok, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Malvidin och cyanidinderivat från Açai Fruit (Euterpe Oleracea Mart.) Motverkar UV-A-inducerad oxidativ stress i immortaliserade fibroblaster. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ En blandning av peptider och socker som härrör från växtcellväggar Ökar växtförsvarsreaktioner på stress och dämpar åldrande-associerade molekylära förändringar i odlade hudceller. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris Lindrar UVB-bestrålning inducerad hudskada via hämning av MAPK/AP-1 och aktivering av Nrf2-ARE Antioxidant System. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Ett tomatstamcellsextrakt, som innehåller antioxidantföreningar och metallkelatbildande faktorer, skyddar hudceller från skador orsakade av tungmetaller. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Chitosan framkallande av Isatis Tinctoria L. Håriga rotkulturer för att förbättra flavonoidproduktiviteten och genuttrycket och relaterad antioxidantaktivitet. Ind. Crops Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, MP; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Sekundär metabolism av läkemedel i växten in vitro-kulturer: strategier, tillvägagångssätt och begränsningar för att uppnå högre avkastning. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Produktion av biomassa och bioaktiva föreningar från oavsiktliga rotkulturer av Polygonum multiflorum med hjälp av Air-Lift-bioreaktorer. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Håriga rotkulturer: ett lämpligt biologiskt system för att studera sekundära metaboliska vägar i växter. Eng. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Etablering av Salvia Officinalis L. Håriga rotkulturer för framställning av rosmarinsyra. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Håriga rötter av Dracocephalum Moldavica: Rosmarinsyrainnehåll och antioxidantpotential. Acta Physiol. Växt. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elithåriga rötter av Ocimum Basilicum som en ny källa till rosmarinsyra och antioxidanter. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Jämförande studie av rosmarinsyrainnehåll i vissa växter av labiatae-familjen. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Växtvävnadskulturer som källor till ingredienser för hudvårdsapplikationer. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Mångfalden av håriga rotkulturer: produktiva möjligheter. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, M.-A.; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Överproduktion av antocyanin i ginsenghåriga rötter förbättrar deras antioxidant-, antimikrobiella och anti-elastasaktiviteter. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Mikroförökning av Opuntia och andra kaktusarter genom axillärskottspridning: En omfattande översyn. Främre. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. In vitro-kultur av lavendel (Lavandula spp.) och produktion av sekundära metaboliter. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. Mikroförökning påverkar inte bara fruktmorfologin hos blåbär (Vaccinium Angustifolium Ait.) utan också dess medicinska egenskaper. I Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Kanada, 17–19 juni 2013; s. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Suleiman, M.; Abbas, S.; Wink, M. In vitro-förökning av medicinalväxten Ziziphora Tenuior L. och utvärdering av dess antioxidantaktivitet. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Ljusinducerad produktion av antidepressiva föreningar i etiolerade skottkulturer av Hypericum Hookerianum Wight & Arn.(Hypericaceae). Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Antioxidantaktivitet av extrakt från in vitro-kulturer av Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. In vitro-förökning och karakterisering av fenolinnehåll tillsammans med antioxidanter och antimikrobiella aktiviteter av Cichorium Pumilum Jacq. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. In vitro-förökning av Caralluma tuberculata och utvärdering av antioxidantpotential. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Mikroförökning av Alocasia Longiloba Miq och jämförande antioxidantegenskaper hos etanolextrakt från den åkerodlade växten, in vitro-förökad och in vitro-härledd kallus. Plants 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: Mechanisms of Induction and Repression. Plant Cell 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, dedifferentiering, totipotens, somatisk embryogenes: vad dessa termer betyder i eran av molekylär växtbiologi? Främre. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Plant Cell Culture Technologies: Ett lovande alternativ för att producera högvärdiga sekundära metaboliter. Arab. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Plant Cell Culture Technology: En ny ingredienskälla. VÅRD 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cell Culture: En innovativ metod för produktion av växtaktiva ämnen; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Storbritannien, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Produktion av biomassa och bioaktiva föreningar från cellsuspensionskulturer av Panax Quinquefolium L. och Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Vid produktion av biomassa och bioaktiva föreningar med hjälp av bioreaktorteknologi; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2014; s. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Produktion av Callus Culture av Onosma Bulbotrichom som aktiv farmaceutisk ingrediens. Iran. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Produktion av flavonoider och polysackarider genom att lägga till Elicitor i olika cellulära odlingsprocesser av Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Växt. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Methyl Jasmonate Stimulerar 20-Hydroxyecdysone-produktion i cellsuspensionskulturer av 'Achyranthes Bidentata'. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos Cellkulturextrakt för skydd mot UV-skador. Kosmettoalett 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. A Novel Engineered Dermis for in Vitro Photodamage Research. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Aktivitets- och stabilitetsstudier av Verbascoside, en ny antioxidant, i dermo-kosmetiska och farmaceutiska topiska formuleringar. Molecules 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis för antirynk- och hudtoningapplikationer. Kosmet. Toalett. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Medicinal Plant Cell Suspension Cultures: Farmaceutiska tillämpningar och högavkastande strategier för de önskade sekundära metaboliterna. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Ett verktyg för att berika den bioaktiva sammansättningen av livsmedel. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molecular Aspects of the Early Stadiums of Elicitation of Secondary Metabolites in Plants. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Ett biotekniskt verktyg för förbättrad produktion av sekundära metaboliter i håriga rotkulturer. Eng. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Interaktiva effekter av bredspektrum monokromatiska ljus på fytokemisk produktion, antioxidanter och biologiska aktiviteter av solanum Xanthocarpum callus kulturer. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Abiotic betonar framkallning förstärker produktiviteten hos Cardoon Calli som biofabriker för specialiserad metabolitproduktion. Antioxidants 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gen-till-metabolitnätverk för biosyntes av lignaner i MeJA-framkallade Isatis Indigotica-håriga rotkulturer. Främre. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Förbättring av ackumulering av bioaktiva föreningar i cellkulturer av Orostachys Cartilaginous A. Bor. genom framkallning med salicylsyra och effekt av cellextrakt på bioaktiv aktivitet. Ind. Crops Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Elicitor-inducerad produktion av biomassa och farmaceutiska fenoliska föreningar i cellsuspensionskultur av dadelpalm (Phoenix Dactylifera L.). Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC Optimering av flavonoidproduktion i växtcellskultur av Thevetia Peruviana framkallad med metyljasmonat och salicylsyra. Braz. Båge. Biol. Technol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Methyl Jasmonate Elicitation Förbättrar Glycyrrhizin-produktionen i Glycyrrhiza Inflata-håriga rötterkulturer. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stimulering av ackumulering av fenoliska föreningar och antioxidantaktivitet i in vitro-odling av Salvia Tebesana Bunge som svar på nano-TiO2 och metyljasmonatutlösare. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Förbättring av stilbenföreningar och antiinflammatorisk aktivitet av metyljasmonat och cyklodextrin framkallad jordnötshårig rotkultur. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Framkallande av antioxidantmetaboliter i Musa-arter in vitro-skottkultur med sackaros, temperatur och jasmonsyra. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulering av kallustillväxt och sekundära metaboliter i olika tymusarter och Zataria Multiflora mikroförökad under ZnO-nanopartiklarsstress. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Silver nanopartiklar framkallade in vitro kalluskulturer för ackumulering av biomassa och sekundära metaboliter i Caralluma Tuberculata. Artif. Celler Nanomedicin Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Effekt av silvernanopartiklar på produktion av fenolföreningar och biologiska aktiviteter i håriga rotkulturer av Cucumis anguria. Acta Biol. Hängde. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO Nanopartiklar har betydande inflytande på in vitro-kultur, Steviolglykosider och antioxidantaktiviteter hos Stevia rebaudiana Bertoni. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanopartiklar med innesluten-tokoferol: syntes, karakterisering och kontrollerad frisättning. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identifiering av sekundära metaboliter i in vitro-kultur av Ammi Majus behandlad med elicitorer. I Proceedings of the IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tammerfors, Finland, 2–7 juli 2000; s. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Hållbar produktion av biomassa och industriellt viktiga sekundära metaboliter i cellkulturer av självläkning (Prunella Vulgaris L.) framkallade av silver och guld nanopartiklar. Artif. Celler Nanomedicin Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Effektiv produktion och återvinning av diterpenoidtanshinoner i Salvia Miltiorrhiza hårrotskulturer med in situ adsorption, framkallning och semi-kontinuerlig drift. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotic Elicitation for Scopolamin Production by Hairy Root Cultures of Datura Metel. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Effekter av framkallande på produktionen av saponin i cellkultur av Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Effekt av Elicitors på förbättringen av Podofyllotoxin-biosyntesen i Suspensionskulturer av Linum Album. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Framkallande av olika Panax Ginseng-transformerade rotfenotyper för en förbättrad ginsenosidproduktion. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Produktion av sekundära metaboliter från cell- och organkulturer: strategier och tillvägagångssätt för förbättring av biomassa och ackumulering av metaboliter. Växtcellsvävnadsorgankult. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Förbättra ackumulationen av rosaviner i Rhodiola Rosea L. Växter som odlats in vitro genom utfodring av prekursorer. Agronomy 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Förbättring i håriga rotkulturer av linumalbum med koniferaldehyd och metylendioxykanelsyra. Prep. Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Biosyntes av hyperforin och adhyperforin från aminosyraprekursorer i skottkulturer av Hypericum Perforatum. Phytochemistry 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Förbättrad produktion av ginsenosider i suspensionskulturer av ginseng genom Medium Replenishment Strategy. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Förbättrad produktion av koffeinsyraderivat i suspensionskulturer av Echinacea Purpurea genom Medium Replenishment Strategy. Båge. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Förbättrad Taxol-produktion och frisättning i Taxus Chinensis-cellsuspensionskulturer med utvalda organiska lösningsmedel och sackarosmatning. Biotechnol. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Översikt och principer för bioteknik: Drivkrafterna för Omics-teknologier. Inom Omics Technologies och Bio-Engineering; Elsevier: Amsterdam, Nederländerna, 2018; s. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Produktion av växtsekundära metaboliter genom att använda biotekniska verktyg. Andra. Metab.-Sources Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Tillämpning av Metabolic Engineering för att förbättra innehållet av alkaloider i medicinalväxter. Metab. Eng. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Bioteknologi för produktion av sekundära växtmetaboliter. Phytochem. Upps. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Reglering av tropanalkaloidmetabolism i växter och växtcellskulturer. I Metabolic Engineering of Plant Secondary Metabolism; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2000; s. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Växtcellskultur för produktion av paklitaxel och andra taxaner. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Sekundära metaboliter av medicinalväxter, 4 volymer: Etnofarmakologiska egenskaper, biologisk aktivitet och produktionsstrategier; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Effekt av immobilisering på celltillväxt och alkaloidinnehåll i cellaggregatkultur av Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Enhancement of Chitosanase Production by Cell Immobilization of Gongronella Sp. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Produktion av podofyllotoxin genom immobiliserade cellkulturer av Juniperus Chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130-1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Studier av produktionen av några viktiga sekundära metaboliter från medicinalväxter av växtvävnadskulturer. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Current Approaches toward Production of Secondary Plant Metabolites. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Living Between Two Worlds: Tvåfaskultursystem för att producera sekundära växtmetaboliter. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Effekten av Ajmalicine-spik och timing av hartstillsats på produktionen av indolalkaloider från Catharanthus Roseus cellkulturer. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Förbättrad produktion av Plumbagin i immobiliserade celler av Plumbago Rosea genom framkallning och in situ-adsorption. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Kvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In situ, extraktionsstrategi påverkar bensofenantridinalkaloidproduktionsflöden i suspensionskulturer av Eschscholtzia Californica. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Avsevärt förbättrad Taxuyunnanine C-produktion i cellsuspensionskulturer av Taxus Chinensis genom processintensivering av upprepad framkallning, sackarosmatning och in situ-adsorption. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Förbättrad antrakinonproduktion från adsorbentbehandlade Morinda Elliptica-cellsuspensionskulturer i produktionsmediumstrategi. Process Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Ansvarsfriskrivning/Utgivarens anmärkning:Uttalandena, åsikterna och data som finns i alla publikationer är endast de av enskilda författare och bidragsgivare och inte från MDPI och/eller redaktörerna. MDPI och/eller redaktören/redaktörerna frånsäger sig ansvar för eventuella skador på personer eller egendom till följd av idéer, metoder, instruktioner eller produkter som hänvisas till i innehållet.

【För mer information:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】